SILVER CHINS

Шиншилловая ферма

Влияние УФ-излучения на усвоение витамина D у шиншилл

Влияние ультрафиолетового излучения на концентрацию 25(OH)D (кальцидиола) в сыворотке крови шиншилл, живущих в неволе (длиннохвостая шиншилла)

Anne E. Rivas DVM, Mark A. Mitchell DVM, MS, PhD, Dip. ECZM (Herpetology), Jennifer Flower DVM, Kenneth R. Welle DVM, Dip. ABVP (Avian), Julia K. Whittington DVM

Для публикации в: Журнал о медицине экзотических домашних животных

Это неотредактированная рукопись, которая была принята к публикации. В качестве услуги для наших клиентов мы предоставляем эту раннюю версию рукописи. Рукопись будет подвергнута редактированию, верстке и пересмотру итоговой корректурной гранкидо того, как она будет опубликована в окончательной цитируемой форме. Обратите внимание, что во время издательского процесса могут быть обнаружены ошибки, которые могут повлиять на содержимое и все юридические правовые оговорки, которые относящиеся к журналу. 

Резюме

Витамин D это важный гормоноподобный витамин у позвоночных, и большинство животных получают этот гормоноподобный витамин с диетой и / или при воздействии ультрафиолетового излучения (УФ - излучение). На сегодняшний день ни одно исследование не определяло, как длиннохвостые шиншиллы (Chinchilla Lanigera) получают витамин D. Цель этого исследования состояла в том, чтобы определить, повлияло ли воздействие ультрафиолетового излучения на уровни кальцидиола в сыворотке крови у шиншилл, содержащихся в неволе. Десять щенков шиншилл были использованы для этого научного исследования. Исходные образцы крови были взяты у животных во время анестезии с помощью изофлурана для определения концентраций кальцидиола в сыворотке. Шиншиллы затем были случайным образом распределены на две экспериментальные группы: группа А, 12 часов воздействия УФ - излучения в день; и группа B, без воздействия УФ - излучения. В конце исследования, на 16 день, у каждого животного брали вторую пробу крови, снова под анестезией с помощью изофлурана, чтобы измерить концентрации кальцидиола в сыворотке. Средние значения ± стандартное отклонение концентраций кальцидиола в сыворотке крови значительно различались (p = 0,048) между молодыми шиншиллами, обеспечивавшимися дополнительным УФ-излучением (189,0 ± 102,7 нмоль/л), и теми, которые не получали дополнительное УФ-излучение (87,8 ± 34,4 нмоль/л). Это исследование показало, что воздействие ультрафиолетового излучения на щенков шиншилл значительно повышало уровень циркулирующего кальцидиола в сыворотке крови. Поскольку витамин D является незаменимым гормоноподобным веществом у позвоночных, эти данные свидетельствуют о том, что обеспечение УФ - излучением шиншилл, живущих в неволе, может быть важным. Требуются дальнейшие исследования важности кальцидиола и ультрафиолетового излучения для шиншилл, живущих в неволе.

Ключевые слова:длиннохвостая шиншилла; холекальциферол; грызун; УФ - излучение ; витамин Д; 25(OH)D

Витамин D является важным веществом, которое необходим для многих различных физиологических процессов, включая управление гомеостазом кальция посредством стимулирования активного всасывания кальция в кишечнике, стимулирование реабсорбции кальция почечными канальцами, регулирование уровня паратиреоидных гормонов и управление активностью остеокластов в кости. [1] Животные получают витамин D либо путем прямого фотохимического синтеза после воздействия ультрафиолетового B излучения (УФ - излучение; 290-315 нм), либо косвенно через пищевые источники. [2] Существует много вариантов использования обоих методов, описанных выше, с помощью которых виды животных получают витамин D. Например, домашние собаки (Canis lupus famisis) и кошки (Felis catus) полностью зависят от витамина D, получаемого из продуктов питания, [3] в то время как ламы (Lama glama) и альпаки (Vicugna pacos) имеют очень низкую оральную биодоступность витамина D и зависят главным образом от дермального фотопреобразования 7-дегидрохолестерина после воздействия УФ - излучения.[4] Другие виды, в том числе красноухая пресноводная черепаха (Trachemys scripta elegans), маисовый полоз (Pantherophis guttata) и балканские черепахи (Testudo hermanni) используют комбинацию обоих методов для удовлетворения своих потребностей в витамине D.[5-7]

До настоящего времени не проводилось никаких исследований для оценки того, как домашние шиншиллы получают витамин D. Домашняя шиншилла происходит от длиннохвостой шиншиллы (Chinchilla lanigera), травоядного грызуна высокогорья Анд. [8] Учитывая, что домашние шиншиллы имеют тот же географический диапазон распространения, что ламы и альпаки, и также подвергаются воздействию более высоких уровней УФ-излучения, обнаруженных на этих больших высотах, логично предположить, что шиншиллы также могли бы использовать дермальный фотохимический синтез витамина D. Кроме того, было обнаружено, что у других домашних травоядных млекопитающих, включая кроликов (Oryctolaguscuniculi) и морских свинок (Caviaporcellus), повышаются уровни витамина D в сыворотке крови в ответ на воздействие УФ–излучения (Mitchell, неопубликованные данные). [9]

Большинство живущих в неволе домашних шиншилл содержатся в помещении с небольшой возможностью воздействия естественного УФ - излучения. В настоящее время не существует рекомендаций по дополнению УФ–излучением содержания шиншиллы, живущей в неволе, а исследования коммерческих диет, производимых для этого вида, ограничены, отсутствуют опубликованные результаты исследований витамина D. [10,11,12] Позвоночные с гиповитаминозом D восприимчивы к болезням, которые могут затронуть опорно-двигательный аппарат, сердечно-сосудистую и иммунную систему. Приобретенная дентальная болезнь часто встречается у домашних шиншилл, живущих в неволе, и вполне возможно, что хронический гиповитаминоз D может играть роль в пищевой остеодистрофии черепа. [13] Кроме того, сердечно-сосудистые заболевания нередки у шиншилл, и роль витамина D в здоровье сердца у этого вида необходимо исследовать.

Цель этого пилотного исследования состояла в том, чтобы определить, окажет ли коммерчески доступное УФ–излучение, производимое флуоресцентным освещением, влияние на уровень циркулирующего в сыворотке кальцидиола у домашних шиншилл в неволе. Биологическая гипотеза, проверенная в этом исследовании, заключалась в том, что содержащиеся в неволе щенки шиншиллы, подвергшиеся воздействию коммерческих ламп, производящих флуоресцентное УФ-излучение, имели бы значительно более высокий уровень кальцидиола в сыворотке, чем щенки шиншиллы, не подвергавшиеся воздействию УФ-излучения. 

Материалы и методы

Этот проект был выполнен в соответствии с правилами, установленными Институциональным комитетом по уходу за животными и их использованию в Университете Иллинойса. Десять щенков шиншилл (возраст 8 недель; 5 самок, 5 самцов), приобретенных из частного питомника (Sailfin Pet Shop, Champaign, IL USA), были использованы для этого исследования. Шиншиллы были помещены одиночно или парами в проволочные клетки (Marchioro SpA, Isola Vicentina, Италия),  с пластиковым поддоном размером 71 см на 44 см на 41,5 см (28 дюймов x 17,3 дюйма x 16,3 дюйма), каждая из которых содержала жердь из пемзы в качестве материала для погрызания (LavaLedge, SuperPet, ElkGroveVillage, ILUSA) и сосновую подстилку (SunseedCompany, BowlingGreen, OHUSA). Свежая вода, полученная из-под крана, предлагалась в поилке. Подстилка клетки и вода менялись ежедневно. Диета состояла из неограниченного доступа к сену из тимофеевки (Western Timothy Hay, Oxbow Animal Health, Murdock, NE USA) и 1 чашке пеллетов на основе тимофеевки (Kaytee Forti Diet Pro Health Food for Chinchillas; Kaytee Products, Inc., Chilton, WI USA) ежедневно. Температура в комнате, в которой находились шиншиллы, составляла приблизительно 23-27ºC (73-80F), поддерживался 12-часовой цикл дня и ночи. Общее освещение в комнате обеспечивалось при помощи использования люминесцентного освещения, не производящего УФ - излучения. Животные акклиматизировались за 72 часа до начала исследования.

После первоначального 72-часового периода акклиматизации шиншиллы подвергались анестезии с использованием изофлурана (Butler Animal Health Supply, Dublin, OH USA) и кислорода через лицевую маску для сбора образцов. Сбор образцов происходил между 16:00-18:00 часами. Шиншиллы располагались дорсально, кровь была собрана из яремной вены каждого животного с использованием иглы 25-го калибра (Tyco Healthcare Group LP, Mansfield, MA USA) прикрепленную к шприцу объемом 3 см3 (Butler Animal Health Supply, Dublin, OH USA). Общий объем образца крови составлял <1% от массы тела (День 0). Кровь помещали в 400-микролитровую капиллярную трубку (Becton Dickinson Microtainer, Thermo Fischer Scientific, Franklin Lakes, NJ USA) и центрифугировали (IEC HN-SII Centrifuge, Thermo Electron Corporation, Milford, MA USA) в течение 90 минут после забора приблизительно при 135 т. об. на 20 минут. Полученную сыворотку затем вынимали, помещали в криопробирку (флаконы CryoTube, 1,8 мл, Nunc A / S, DK-4000 Roskilde, Дания) и замораживали при -17ºC.

После того, как был получен первоначальный образец крови, каждую шиншиллу помещали в одну из двух групп используя генератор случайных чисел (Med Calc 11.3.2.0, Ostend, Belgium). В течение 16-дневного периода исследования Группа A (n = 5) была обеспечена дополнительным освещением с УФ - излучением, в то время как животные в Группе B (n = 5) не были им обеспечены. Дополнительное освещение с УФ-излучением обеспечивалось от 2 ламп (Sun-Glow Coil Lantern, 20 Watt 5.0 UVB, Fluker Farms, Port Allen, LA USA), расположенных на расстоянии примерно 24 см (9,4 дюйма) от клеткии на расстоянии 46,5 см (18,3 дюйма) от дна клетки. Дополнительный свет с УФ-излучением предоставлялся непрерывно и ежедневно в течение 12 часов. Для всех групп УФ-излучение измерялось с помощью радиометра (UV meter: Model #1400, International Light Inc., Newburyport, MA USA) на расстоянии 34 см (13,4 дюйма) от источников света (уровень нахождения шиншилл) в сетке, состоящей из 9 точек вдоль центральной оси и по периметру клетки в день 1, день 8 и день 16 после 10 часов световой активности.

На 16-й день исследования между 16:00-18:00 часами все животные были снова анестезированы и у них взяли образцы, описанные выше. Все образцы (дни 0 и 16) были отправлены на замороженных упаковках геля в ветеринарную диагностическую лабораторию Diagnostic Center for Population and Animal Health, East Lansing, MI USA) для измерения концентраций кальцидиола в сыворотке крови с использованием радиоиммунологического анализа.

Кроме того, аликвотную пробу сыворотки, отделенную в день сбора, размораживали и использовали для измерения биохимии сыворотки с использованием коммерческого настольного анализатора (Vet Scan VS2, Abaxis, Union City, CA USA). Для измерения биохимических показателей был использован роторный биохимический анализатор для млекопитающих (Comprehensive Diagnostic Profile, Abaxis). Этот профиль количественно определил уровни альбумина, щелочной фосфатазы, аланина трансаминазы, амилазы, общего билирубина, азота мочевины крови, общего кальция, фосфора, креатинина, глюкозы, ионизированного натрия, ионизированного калия, общего белка и глобулинов.

Размер образца, выбранного для этого исследования, основывался на следующих предположениях: ожидаемая разница в уровнях кальидиола между экспериментальной и контрольной группами не менее 50 ммоль/л, стандартное отклонение 25 ммоль/л, альфа 0,05, и степень 0,80 (MedCalc 11.3.2.0). Распределение данных оценивали, используя критерий Шапиро-Уилка, коэффициент асимметрии распределения, эксцесса и графиков квантиль-квантиль. Для данных, которые были распределены нормально, указывались среднее значение, стандартное отклонение (SD) и минимальные-максимальные значения (Min-Max), в то время как для не нормально распределенных данных записывались их медиана, 25-75 процентилей (%) и Min-Max. Данные, которые были не нормально распределены, логарифмически преобразовывались для параметрического анализа. Критерий Левена использовался для определения того, соответствуют ли данные предположению об однородности дисперсии. Был использован отдельный t-критерий образцов для того, чтобы определить зависел ли вес от пола. Парный t-критерий образца был использован для того, чтобы определить были ли различия средних значений величин веса, концентраций кальцидиола или биохимии между 0 и 16 днями. Затем был использован образцов t-критерий независимых выборок для того,чтобы определить были ли различия средних значений величин между экспериментальной (воздействие УФ - излучения) и контрольной (без УФ - излучения) группами для каждой из зависимых переменных. Так же этот критерий использовался для того, чтобы определить, имеет ли влияние пол на эти зависимые переменные. Для анализа данных использовалось коммерческое статистическое программное обеспечение (SPSS 19.0, SPSS Inc., Chicago, IL USA). Альфа для этого исследования была установлена ​​как 0,05. Анализ мощности после сбора данных (Post-hoc) выполнялся при любом сравнении, в котором p составляет 0,06-0,10, чтобы определить вероятность ошибки второго типа. 

Результаты

Десять шиншилл (5 подвергались воздействию УФ - излучения, 5 не подвергались) были использованы для этого исследования. Существовала значимая разница (t = -4,23, p = 0,002) в массе тела между днем ​​0 (среднее значение: 367,8 г, стандартное отклонение: 54,3, Мин-Макс: 300,0-460,0) и днем ​​16 (среднее значение: 404,5 г, стандартное отклонение: 53,5, Мин-Макс: 320,0 - 490,0). Было установлено, что вес не зависел от пола (день 0: t = 0,119, р = 0,91; день 16: t = 0,56, р = 0,6) и группы (день 0: t = 1,5, р = 0,25; день 16: t = 1,49, р = 0,26) в два дня выборки. Не было значительного различия в уровнях кальцидиола в дни 0 и 16 (t = -1,49, p = 0,174) при оценке всех шиншилл; тем не менее была обнаружена значительная разница (t = 2,4, р = 0,048) в уровнях 25(OH)D между двумя периодами отбора проб по группам (средняя разница между периодами отбора проб; например, уровни 25-гидроксивитамина D в день 0 минус уровень 25(OH)в день 16) (группа с УФ-излучением - среднее значение: 78,1 ммоль/л, стандартное отклонение: 72,1, мин-макс: -11,0-172,0; группа без УФ-излучения - среднее значение: -4,4 ммоль/л, стандартное отклонение: 27,4, мин-макс: -47,0-22,0) (таблица 1). Не было выявлено значимого различия в уровнях 25(OH)в дни 0 (t = -0,06, p = 0,95) и 16 (t = 1,44, p = 0,24) в зависимости от пола. Также не было значительной разницы в показателях биохимии в день 0 или день 16 по группам (все p> 0.10) или полу (все p> 0.10). Поскольку не было различий в биохимии, значения для каждого животного были усреднены, и в качестве эталона была установлена ​​таблица 2. Уровни УФ-излучения, измеренные на уровне подстилки клетки для животных в контрольной группе, составляли <0,001 мкВт/см2 на протяжении всего исследования, в то время как уровни УФ–излучения в группе с дополнительным УФ-излучением варьировались от 19-157 мкВт/см2. 

Обсуждение

Результаты этого исследования подтверждают гипотезу о том, что воздействие на щенков шиншиллы УФ-излучения от искусственных источников света приводит к статистически значимому увеличению 25(OH)D в сыворотке. Витамин D3 синтезируется в результате фотосинтетического превращения 7-дегидрохолестерина в провитамин D3 в коже позвоночных после воздействия УФ-излучения. [16] Провитамин D3 - это нестабильная молекула, которая, подвергаясь температурно-зависимой изомеризации, превращается в витамин D3.[17] Печень, в свою очередь, гидроксилирует витамин D3 в кальцидиол. Это форма для хранения витамина, и она связана с белком для системного кровообращения. [17] Почки преобразуют кальцидиол в кальцитриол, который является активной формой данного вещества. [16]

Животные могут получать витамин D3 либо напрямую с помощью этого способа, либо косвенно путем потребления пищевых источников. [17] Результаты этого исследования показывают, что шиншиллы действительно используют фотохимический путь, который согласуется с результатами других травоядных видов, таких как викунья, кролики и морские свинки. [4,9]

У одного из пяти животных, подвергшихся воздействию УФ-излучения, наблюдалось снижение уровня 25-гидроксивитамина D в сыворотке в течение периода исследования со значением в день 0 98 нмоль/л и в день ​​18 было получено значение 86 нмоль. Возможно, что эта шиншилла получала более низкие уровни УФ-излучения из-за того, что проводила большую часть времени на или под жердочкой из пемзы, которая не находилась непосредственно под флуоресцентным светом. Жерди из пемзы были предоставлены в качестве устройств для погрызания для шиншилл, хотя наблюдалось, что животные забирались на или под них. Измерения уровней УФ-излучения проводились только на уровне подстилки, и находящаяся выше жердь могла оказаться за пределами зоны диффузии УФ-излучения. Если этот факт является причиной, то он будет представлять собой недостаток в методике исследования. Тем не менее, цель этого исследования состояла в том, чтобы обеспечить воздействие УФ-излучения на животных в ожидаемых условиях содержания в неволе, что включало жердь из пемзы как форму обогащения обстановки. Несмотря на разницу в реакции этой отдельной шиншиллы на УФ-излучение по сравнению с другими животными в экспериментальной группе, включение его значений в общий анализ все же привело к значительному различию между уровнями 25-гидроксивитамина D до и после применения УФ - излучения в группе А и группе. B.

В качестве альтернативной версии, это животное могло иметь отклонение в пути биосинтеза витамина D. У людей существует множество известных основанных на физиологии этиологий гиповитаминоза D. Например, низкий уровень 25-гидроксивитамина D может объяснен сниженным синтезом, вторичным по отношению к печеночной недостаточности, или повышенными потерями при нефротическом синдроме. [1] У людей также может наблюдаться низкий уровень 25-гидроксивитамина D в сыворотке из-за повышенной трансформации в 1,25 дигидроксивитамин D, которая возникает при первичном гиперпаратиреозе, гранулематозных расстройствах, саркоидозе, туберкулезе, некоторых лимфомах и гипертиреозе. [1] Различия в пигментации кожи также могут влиять на фотопреобразование витамина D [17]; однако, это животное не отличалось по цвету шерсти от его сородичей.

Чтобы оценить физиологическую важность повышения уровня 25-гидроксивитамина D, наблюдаемого у животных, подвергшихся воздействию УФ-излучения, результаты необходимо сравнить с контрольными диапазонами у шиншилл. К сожалению, не существует установленных эталонных значений для 25-гидроксивитамина в сыворотке для шиншилл. У людей Эндокринное общество США определяет дефицит витамина D как уровень в сыворотке менее 50 нмоль/л, а недостаточность витамина D - 52,5–72,5 нмоль/л. Другая работа показала, что токсичность проявляется при значениях, превышающих 364 нмоль/л. [1]. На основании значений, указанных выше, несколько животных в контрольной группе будут считаться имеющими дефицит или недостаток витамина D. Перекрестное или проспективное исследование, включающее здоровых животных, необходимо для того чтобы однозначно определить надежный эталонный стандарт для шиншилл.

Увеличение веса, наблюдаемое у шиншилл между периодами отбора проб (+ 10%), не было неожиданным из-за молодого возраста этих животных. Часто сообщается, что самки шиншилл крупнее самцов [8], хотя у шиншилл в этом исследовании не было обнаружено значительных различий в весе между полами. Учитывая, что эти животные все еще растут, возможно, что, когда они достигнут своего полного взрослого размера, они начнут демонстрировать изменение веса в зависимости от пола. Из-за того, что в контрольной группе не было отмечено повышения уровня витамина D, возникла обеспокоенность, что эти животные будут более восприимчивы к клиническим проявлениям дефицита витамина D, поскольку они продолжают расти. У людей дефицит витамина D проявляется в недостаточной минерализации растущей кости или остеоидной ткани и связанной с ней остеомаляции, что приводит к изгибанию длинных костей, отечности концов длинных костей, патологическим переломам, плохому росту, задержке прорезывания зубов и замедлению развития моторики. [1]

Также было обнаружено, что хронический недостаток витамина D во время роста и в зрелом возрасте способствует развитию заболеваний зубов у позвоночных. Как и у домашних кроликов и морских свинок, дентальная болезнь является очень распространенным заболеванием у шиншилл, попавших в ветеринарные клиники. Морские свинки, кролики и шиншиллы, все они, обладают постоянно растущими резцами и щечными зубами, и классифицируются как имеющие гипсодонтнуюарадикулярную зубочелюстную систему (длинные коронки без анатомического корня). [13] Маленьким травоядным животным такая зубочелюстная система необходима для компенсации постоянного износа, но в неволе условия, по-видимому, предрасполагают к чрезмерному росту зубов. Сравнение длин коронок у диких, из зоопарков, клинически нормальных разводимых в неволе и пораженных зубными заболеваниями разводимых в неволе шиншилл выявило среднюю длину коронки 5,9 мм, 6,6 мм, 7,4 мм, 10 мм соответственно. [18] Шиншиллы со стоматологическими заболеваниями в исследовании, указанном выше, также страдали дефектами окклюзии и зубными абсцессами. Уровни 25-гидроксивитамина D в сыворотке у этих животных не измерялись, для оценки потенциальной связи гормоно подобного витамина и дентальной болезни, но дальнейшее исследование было бы полезно для определения наличия корреляции.

Предыдущие исследования показали, что шиншиллы со стоматологическими заболеваниями имеют существенные отличия от здоровых шиншилл по уровню кальция и фосфора в плазме. [19] Кальций и фосфор являются ключевыми элементами в формировании костей и зубов. Витамин D отвечает за метаболизм этих минералов, регулируя их уровень в сыворотке. [2] Хорошо известно, что хронический дефицит витамина D приведет к аномально низким уровням кальция и фосфора в сыворотке и последующей плохой минерализации скелета. [17] У людей сниженные уровни витамина D напрямую связаны с резорбцией альвеолярного отростка и последующей стоматологической патологией. [20] Кроме того, у людей с гипофосфатемическим рахитом часто наблюдается стоматологическая патология, включающая гипоплазию эмали, дефекты окклюзии и абсцессы зубов. [21] Все биохимические значения в сыворотке животных в этом исследовании, включая общий кальций и фосфор, считались непримечательными для мелких грызунов в неволе. [8] Однако животные в этом исследовании были молодыми, и их небольшой возраст в сочетании с относительно коротким периодом исследования, возможно, не давал достаточно времени для клинических патологических аберраций вследствие хронического легкого гиповитаминоза D.

Можно привести аргумент, что важность дермального биосинтеза витамина D у шиншилл меньше, чем у домашних лам, альпак и кроликов, поскольку последние ведут ночной образ жизни, а первые - дневной. Это правда, что некоторые виды, лишенные естественного воздействия УФ-излучения, приспособились к тому, чтобы быть менее зависимыми от витамина D для гомеостаза кальция. Живущий в земле голый землекоп (Heterocephalus glaber) и ночной ямайский листонос (Artibeus jamaicensis) могут манипулировать минеральными запасами в костях и зубах независимо от витамина D в сыворотке, чтобы поддерживать кальций в сыворотке в пределах физиологических норм. [22,23] Кроме того, из-за очень низких уровней 7-дегидрохолестерина обнаруженных в коже ямайского листоноса считается,что эти животные не вырабатывают витамин D посредством дермального синтеза. [23] Однако не все ночные виды развили эту способность. В качестве альтернативы ночной турецкий полупалый геккон (Hemidactylus turcicus) развил повышенную чувствительность к УФ-излучению, позволяющую этим видам максимизировать их способность синтезировать витамин D в условиях слабого освещения. [24] Поскольку шиншиллы сохранили способность дермального биосинтеза витамина D, это предполагает, что они могут иметь потребность в УФ–излучении для поддержания нормальных физиологических процессов.

В настоящее время не существует рекомендаций по обеспечению шиншилл в неволе ультрафиолетовым излучением, но возможно, что оснащение искусственными источниками света, которые производят УФ-излучение для шиншилл, содержащихся только в помещении, могло бы принести пользу для здоровья этих животных. В естественных условиях животные, обладающие способностью непосредственно вырабатывать витамин D, делают это, но эта способность теряется у животных, содержащихся в помещении, если только они не обеспечены нефильтрованным солнечным светом или воздействием УФ-излучения. [2,25] Во всём остальном эти домашние животные ограничены пищевыми источниками витамина D. Пищевой витамин D не следует считать подходящей заменой эндогенных источников витамина D для животных, которые зависят от фотохимического синтеза. Эти животные могут быть не в состоянии полностью использовать пищевые источники витамина D. [4] Более того, токсичность, связанная с избыточной добавкой в ​​пищу этого жирорастворимого витамина, хорошо задокументирована, но эти токсичности не были обусловлены эндогенной выработкой прифизиологической регуляции фотохимического синтеза. [16]

В этом исследовании не было определено, какое влияние или ценность пищевой витамин D оказывал на уровень циркулирующего 25-гидроксивитамина D; кроме того, тестируемая гипотеза была разработана только для того, чтобы оценить, влияли ли искусственные источники света, производящие УФ-излучение, на циркулирующие уровни этого гормоно подобного витамина. По этическим причинам животных не заставляли голодать и не обеспечивали диетой с дефицитом витамина, чтобы определить диетическое влияние витамина D, как это было сделано для других видов. [5] Важно отметить, что шиншилл в нашем исследовании ежедневно кормили идентичной высококачественной пищей. Следовательно, пища вряд ли будет ответственна за значительную разницу 25-гидроксивитамина D в сыворотке между исследуемыми группами.

Несмотря на то, что шиншиллы могут получить пользу от добавления УФ-излучения, важно помнить, что увеличение воздействия УФ-излучения имеет риски и может повлечь поражения кожи и глаз. [26,27] Ни у одного из животных в текущем исследовании не было отмечено никаких неблагоприятных клинических признаков, они также не считались подверженными воздействию вредных уровней УФ-излучения (> 400 мкВт/см2). [26,27] Если шиншилл нужно обеспечить УФ-излучением, необходимо провести дальнейшие исследования, чтобы определить минимальные эффективные его уровни для стимулирования фотопреобразования и уменьшения вероятности облучения.

Это исследование является первым, которое показывает, что УФ-излучение, создаваемое искусственным освещением, может значительно увеличить содержание 25-гидроксивитамина D в сыворотке крови у молодых шиншилл, получавших одинаковую диету. Клиническое значение повышения 25-гидроксивитамина D в сыворотке в настоящее время неизвестно; однако ожидается, что оно будет важным. На основании информации, представленной здесь, и в упомянутых более ранних исследованиях, необходима дальнейшая оценка воздействия витамина D на шиншилл. Кроме того, в будущих исследованиях следует оценить, реагируют ли взрослые шиншиллы на УФ-излучение так же, как и молодые шиншиллы. Следует установить контрольные диапазоны содержания витамина D для шиншилл живущихна открытых пространствах и содержащихся в помещении, как взрослых, так и молодых. Кроме того, необходимы исследования для оценки долгосрочных эффектов УФ-излучения и различных его уровней, особенно связанных с приобретенной дентальной болезнью и уровнями минеральных веществ в сыворотке домашних шиншилл. Изменения в рекомендациях по содержанию, включая полноспектральное освещение, могут стать стандартом содержания с целью снижения частоты стоматологических заболеваний и улучшения общего состояния здоровья домашних шиншилл. 

Источники литературы:

  1. Holick MF: Vitamin D deficiency. N Engl J Med 357:266-281, 2007
  2. Dittmer KE, Thompson KG: Vitamin D metabolism and rickets in domestic animals: A review. Vet Path 48:389-407, 2011
  3. How KL, Hazewinkel HAW, and Mol JA: Dietary vitamin D dependence of catand dog due to inadequate cutaneous synthesis of vitamin D. Gen and Comp Endocrin 96:12-18, 1994
  4. Van Saun RJ: Nutritional diseases of llamas and alpacas. Vet Clin North AmFood Anim Pract 25:797-810, 2009
  5. Acierno MJ, Mitchell MA, Roundtree MK, Zachariah TT: Effects of ultraviolet

radiation on 25-hydroxyvitamin D3 in red-eared slider turtles (Trachemys scripta

elegans). Am J Vet Res 67:2046-2049, 2006

  1. Acierno MJ, Mitchell MA, Zachariah TT, Roundtree MK, Kirchgessner MS,

Guzman DSM: Effects of ultraviolet radiation on plasma 25-hydroxyvitamin D3 in

corn snakes (Elaphe guttata). Am J Vet Res 69:294-297, 2008

  1. Selleri P, Di Girolamo N: Plasma 25-hydroxyvitamin D3 concentrations in

Hermann’s tortoises (Testudo hermanni) exposed to natural sunlight and two

artificial ultraviolet radiation sources. Am J Vet Res 73:1781-1786, 2012

  1. Quesenberry KE, Donnelly TM, Mans C: Biology, husbandry, and clinical

techniques of guinea pigs and chinchillas, in Quesenberry KE, Carpenter JW

(eds): Ferrets, Rabbits, and Rodents: Clinical Medicine and Surgery (ed 3). St.

Louis, MO, Elsevier/Saunders, pp 157-173, 2012

  1. Emerson JA, Whittington JK, Allender MC, Mitchell MA: Effects of ultraviolet

radiation produced from artificial lights on serum 25-hydroxyvitamin D

concentrations in captive domestic rabbits (Oryctolagus cuniculi). J Vet Res inpress

  1. King KW, Orcutt FS: Nutritional studies of the chinchilla, with special reference toascorbic acid and thiamine. J Nutri 48:31-39, 1952
  2. Larrivee GP, Elvehjem CA: Studies on the nutritional requirements of chinchillas:four figures. J Nutr 52:427-436, 1954
  3. Wolf P, Schroder A, Wenger A, Kamphues J: The nutrition of the chinchilla as acompanion animal – basic data, influences and dependences. J Anim Physiol a

Anim Nutr 87:129-133, 2003

  1. Reiter AM: Pathophysiology of dental disease in the rabbit, guinea pig, and

chinchilla. J Exotic Pet Med 17:70-77, 2008

  1. Pignon C, Guzman DS, Sinclair K, Baey C, Pignon JP, Mayer J, Kittleson MD,

Paul-Murphy J: Evaluation of heart murmurs in chinchillas (Chinchilla lanigera):

59 cases (1996-2009). J Am Vet Med Assoc 241:1344-7, 2012

  1. Al Mheid I, Patel RS, Tangpricha V, Quyyumi AA: Vitamin D and cardiovasculardisease: is the evidence solid? Eur Heart J. Epub ahead of print, 2013
  2. Holick MF, Smith E, Pineus S: Skin as the site of vitamin D synthesis and targettissue for 1,25-dihydroxyvitamin D3. Arch Dermatol 123:1677-1683, 1987
  3. Lips P: Vitamin D physiology. Prog in Biophysics and Molec Bio 92:4-8, 2006
  4. Crossley DA, Miguélez MM: Skull size and cheek-tooth length in wild-caughtandcaptive-bred chinchillas. Archives of Oral Biology 46:919-928, 2001
  5. Muszczynski Z, Sulik M, Ogonski T, Antoszek J: Plasma concentration of

calcium, magnesium, and phosphorus in chinchilla with and without tooth

overgrowth. Folia biologica 58:107-111, 2010

  1. Kaye EK: Bone health and oral health. J Am Dent Assoc 138:16-619, 2007
  2. Souza MA, Soares Junior LAV, Santos MA, Vaisbich MH: Dentalabnormalitiesand oral health in patients with hypophosphatemic rickets. Clinics 65:1023-1026,2010
  3. Buffenstein R, Yahav S: Cholecalciferol has no effect on calcium and inorganicphosphorous balance in a naturally cholecalciferol-deplete subterranean

mammal, the naked mole rat (Heterocephalus glaber). J Endocrinol 129:21-26,1991

  1. Kwiecinski GG, Zhiren L, Chen TC, Holick MF: Observations on serum 25-

hydroxyvitamin D and calcium concentrations from wild-caught and captive

neotropical bats. Gen and Comp Endocrinol 122:225-231, 2001

  1. Carman E, Ferguson GW, Gehrmann WH, Chen TC, Holick MF:

Photobiosynthetic opportunity and ability of UVB generated vitamin D synthesisin free-living house geckos (Hemidactylus turcicus) and Texas spiny lizards(Sceloporsus olicaceous). Copeia 2000:245-250, 2000

  1. Tuchinda C, Srivannaboon S, Lim HW: Photoprotection by window glass,

automobile glass, and sunglasses. J Am Acad Dermatol 54:845-854, 2006

  1. Ley RD, Applegate LA, Stuart TD, Fry RJ: UV radiation-induced skin tumorsinMonodelphis domestica. Photodermatol 4:144-147, 1987
  2. Sabourin CL, Kusewitt DF, Fry RJ, Ley RD: Ultraviolet radiation-induced corneal tumours in the South American opossum, Monodelphis domestica. JCompPathol 108:343-359, 1993

Таблица 1. Уровни 25-гидроксивитамина D (нмоль/л) у щенков шиншилл, подвергавшихся или не подвергавшихся воздействию искусственного освещения, производящего УФ-излучение. 

Группа

День

Среднее значения

Стандартное отклонение

Мин - Макс

С УФ - излучением

0

110,7

39,5

63,0-158,0

 

16

189,0

102,7

91,0-319,0

Без УФ – излучения

0

92,2

52,0

31,0-166,0

 

16

87,8

34,4

53,0-126,0


Таблица 2. Биохимический анализ сыворотки крови 10 щенков шиншилл.
 

Параметр

Среднее значение

Стандартное отклонение

Мин - Макс

Альбумин (г / дл)

3,68

0,49

3,0-4,5

Щелочная фосфатаза (ед. / Л)

118,9

74,5

33,5-205,0

Аланин-трансаминаза(ед. / Л)

17,0

5,7

12,0-29,5

Амилаза(ед. / Л)

610,3

109,4

478.0-805.0

Общий билирубин(мг / дл)

0,35a

0,30-0,35b

0.3-0.4

Азот мочевины крови(мг / дл)

20,3

4,78

14.5-28.0

Общий кальций(мг / дл)

9,0

1,47

6.1-10.8

Фосфор(мг / дл)

7,6

1,6

5.5-10.0

Креатинин(мг / дл)

0,42

0,05

0.35-0.50

Глюкоза(мг / дл)

154,8

13,4

130.0-170.0

Ионизированный натрий (ммоль / л)

152,2

2,0

149.0-155.5

Ионизированный калий (ммоль / л)

4,1

0,23

3.7-4.4

Общий белок

4,2

0,42

3.55-4.95

Глобулин

0,54

0,18

0.30-0.85

a-медиана

b-25-75%

Перевод статьи: Денис Михайлов

                                           

© 2008-2019. SilverChins. Развитие шиншиловодства в России. 

Все материалы, опубликованные на сайте в любом виде, являются объектами авторского и имущественного права. 

Любое их использование должно быть согласовано с администрацией сайта.